保存运输方法
保存运输方法

保存运输方法

透射电镜样本准备方法及要求

实验目的:观察细胞内部细胞器的结构及变化,如线粒体,内质网,自噬体等。以下所有样本必须尽量新鲜,固定液或悬浮液都不得冷冻结冰!


样本类型

样品保存运输要求

动物组织样本①1-3min  内取样,取样组织2mm×2mm  大小,尽量薄。固定液渗透能力有限,超出 此范围后组织会无法完全固定,后续实验无法完成,务必请重视此过程。
②取材时尽量精确到需要观察的目的部位(如观察肾小球取肾皮质;观察胰岛取胰岛丰富的 胰尾;皮肤、肠胃等在固定液中易打卷的组织可将组织粘在滤纸上进行固定)。
③取材时一定注意避免镊子挤压等机械损伤,刀片要锋利避免挫伤组织。
④组织取下后立即投入电镜固定液内避光室温固定2h,再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在 保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。4℃时样本可保存1个月左右。
植物组织样本①取材要求同动物组织样本。
②组织投入固定液后需要进行真空抽气让组织沉底,如无条件抽气可用滤纸将组织塞进固定液 内,组织不能漂浮在固定液表面。
细胞样本贴壁细胞:
方法一 :
①培养好的细胞弃培养基,加入2.5%的常温戊二醛固定液。
②常温避光固定5min左右,用细胞刮(或软橡胶盖切的平整小方块)沿一个方向轻轻刮下 细胞,切记不要反复刮,避免细胞刮破。
③用巴氏吸管把细胞液吸入离心管内,放入离心机(不超过3000转),离心2min左右, 细胞团要有绿豆大小。
④弃固定液后加新的电镜固定液,把细胞团轻轻挑起,悬浮于固定液中。
⑤室温避光固定30min,   再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在保存和运输过程中固定液切
勿冷冻结冰。
方法二:(对细胞形态没有要求的)
①培养好的细胞弃培养基,加入胰酶。
②胰酶消化好后(时间不宜过长),用培养基终止消化,用吸管把细胞吹下来。吸入离心管, 离心(不超过3000转),2min左右,细胞团要有绿豆大小。
③弃上清,加入2.5%的常温戊二醛固定液,把细胞团轻轻挑起,悬浮于固定液中。
④室温避光固定30min,  再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在保存和运输过程中因定液切
勿冷冻结冰。
悬浮细胞:
离心收集细胞要肉眼可见细胞沉淀绿豆大小,弃培养基后加电镜固定液室温避光固定30min, 再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。
细菌样本长于固体培养基的细菌:   将细菌连带着培养基一起挑下放于电镜固定液内室温避光固定2h, 再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。

悬浮细菌孢子等:离心收集细菌要肉眼可见细菌沉淀绿豆大小,弃培养基后加电镜固定液室  温避光固定2h,再转移至4℃保存,4℃冰袋运输,在保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。
病毒破碎组织细胞,粗离心去除细胞碎片取上清,超速离心分离出病毒(病毒提取的过程需要客 户自己完成)。用缓冲液(如PBS)悬浮病毒,体积至少50μL,远距离干冰冻存运输,近距 离4℃保存运输,尽快滴片做负染后及时电镜观察拍照。
外秘体囊泡等客户自己完成外泌体囊泡等的提取收集,用缓冲液(如PBS)或者试剂盒中的保存液悬浮,体 积至少50μL,远距离干冰冻存运输,   近距离4℃保存运输,尽快制片做负染后及时电镜观察 拍照(因此类样品极易降解,样品越新鲜越好,最好数小时内完成滴片负染,否 则做出的效 果很不理想甚至完全观察不到)。
纳米材料等无机材料直接准备粉剂或用缓冲液(如PBS)悬浮,常温保存运输即可(需要超声的备注)。做负染后 电镜观察拍照。